Meiobenthos

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Meiofauna sont des invertébrés benthiques du petit qui vivent dans des environnements d'eau doux marin et. La limite Meiofauna définit lâchement un groupe d'organizations par leur taille, plus grand que la faune microbienne mais plus petit que le Macrofauna , plutôt qu'un groupement taxonomique. Dans la pratique c'est des organizations qui peuvent passer par une maille de 1 millimètre mais sera maintenue par une maille de 45 μm, mais les dimensions exactes varieront du chercheur au chercheur. Si une organization traversera une maille de 1 millimètre dépendra également au moment si elle est vivante ou morte à l'heure du tri.

Les meiobenthos de limite ont été inventés la première fois en 1942 par la jument , mais des organizations qui s'inséreraient dans la catégorie de meiofauna ont été étudiées depuis le XVIIIème siècle. Un bon texte complet sur le meiofauna est le '' introduction à l'étude du meiofauna '' par Higgins et Thiel (1988).

Rassemblement des meiobenthos

Meiofauna le plus généralement sont produits dans les environnements sédimentaires dans des environnements d'eau doux marin et, du littoral au hauturier. Ils peuvent également être trouvés sur les substrats durs vivant sur les algues , l'environnement de Phytal , et les invertébrés sessiles (bernaches, parcs à moules, etc.

Méthodologies de prélèvement

L'échantillonnage des meiobenthos dépend clairement de l'environnement et si des échantillons quantitatifs ou qualititative sont exigés. Dans l'environnement sédimentaire la méthodologie utilisée également dépend de la morphologie physique du sédiment. Pour le prélèvement qualititative dans la zone littorale, pour le sédiment brut et fin, un seau et une cosse fonctionneront. Dans le sub-littoral et l'eau profonde une certaine forme d'encavateur (comme l'encavateur de Van Veen) est exigée, bien qu'un à maille fine (environ 0.25 millimètre ou moins) fonctionne également.

Pour le prélèvement quantitatif des environnements sédimentaires à toutes les profondeurs une large variété d'échantillonneurs ont été conçues. Le plus simple est une seringue en plastique avec l'extrémité découpée pour former un corer de piston qui peut être déployé dans la zone littorale, ou dans le sub-littoral using la vitesse de SCAPHANDRE. Généralement plus l'eau plus compliqué est profonde le procédé de prélèvement devient. Pour prélever le meiofauna sur les substrats durs, les environnements phytal et epizooic, la seule méthodologie pratique est de couper ou érafler outre d'un secteur connu de substrat et le placer dans un sachet en plastique.

Méthodologies d'extraction

Il y a une large variété de méthodes pour extraire le meiofauna à partir des échantillons de leur habitat selon si des spécimens de phase ou fixes sont exigés. Pour extraire le meiofauna de phase on doit faire face à le grand nombre d'espèces qui s'accrochent ou s'attache au substrat une fois perturbé. Afin d'obtenir le meiofauna pour libérer leur poignée là être trois méthodologies disponibles.

Le premier, et le plus simple, est choc osmotique, ceci est réalisé en submergeant l'échantillon en eau doux (clairement ceci fonctionnera seulement pour les échantillons marins) pendant quelques secondes. Ceci fera libérer les organizations après quoi elles peuvent alors être secouées librement du substrat et être filtrées dehors à l'aide d'une maille de 45 μm et être immédiatement retournées à l'eau de mer filtrée fraîche. Beaucoup d'organizations viendront par cet indemne de processus tant que le choc osmotique ne dure pas trop longtemps.

La deuxième méthodologie est l'utilisation d'un anesthésique. La solution preferred pour des meiobenthologists est le chlorure isotonique de magnésium (7.5g MgCl₂ · 6H₂O en 100 ml d'eau distillée). L'échantillon est immergé dans la solution isotonique et est parti pendant une période de la minute 15, après quoi le meiofauna sont secoués exempt du substrat et dehors de nouveau filtrés à l'aide d'une maille de 45 μm et immédiatement retournés à l'eau de mer filtrée fraîche.

La troisième méthodologie est technique de glace d'eau de mer du d'Uhlig de . Ceci se fonde sur les organizations se déplaçant en avant d'un avant d'eau de mer glacée abaissant par l'échantillon les expulsant finalement du sédiment. Il est le plus efficace sur des échantillons provenant des régions tempérées et tropicales.

Pour des études importantes où un grand nombre d'échantillons sont rassemblés concurremment, les échantillons sont normalement fixes using la solution de formaline de 10% et le meiofauna extrait à une date ultérieure. Il y a deux méthodologies principales d'extraction. Le premier, décantation, fonctionne bien avec les sédiments bruts. Des échantillons sont secoués dans un excès de l'eau, le sédiment est brièvement permis d'arranger et le meiofauna séparé par filtrage. La deuxième méthodologie, la technique de flottaison, travaux meilleurs avec des sédiments plus fins étaient la masse des particules de sédiment est proche de celle du meiofauna. La meilleure solution à employer est la silice colloïdale, Ludox™. L'échantillon est remué dans la solution de Ludox™ et a laissé au banc à dossier pour la minute 40, après quoi le meiofauna sont filtrés dehors. Avec les deux méthodologies des extractions répétées devraient être faites (au moins trois) avec chaque échantillon pour s'assurer qu'au moins 95% de la faune est extrait.

Taxa de Meiofaunal

Basé sur l'arrangement du Nielsen (2001). Taxa de Meiofaunal apparaître en texte "BOLD" du .
Protozoaires de

Foraminifera de de
Ciliophora
Animalia -- Eumetazoa
Cnidaria de de
Triploblastica -- Bilateria
Protostomia -- Spiralia
Schizocelia
Sipuncula
Articulata
molluscums de de
Euarticulata
Annelés
Oligochaeta
polychètes de de
Panarthropoda
Onychophora
Arthropoda
Tardigrada
Amphipoda de de
Cladocera
Cumacea
Harpacticoida
isopode de de
Ostracoda
Mystacocarida
Syncarida
Tanaidacea
Thermosbaenacea
Halacarida
Pycnogonida de de
Palpigradida
Insecta

Bryozoaires

Entoprocta
Ectoprocta
Paranchymia
de Platyhelminthes (Turbellaria )
Nemertea
Gnathifera
Rotifera
Gnathostomulida
Chaetognatha
Cycloneuralia
Gastrotricha
Introverta
Nematoda
Nematophora
Cephalorhyncha
Priapulida
Kinorhyncha
Loricifera

Deuterostomia

Phoronida
Brachiopoda
Neorenalia
Pterobranchia
échinodermes de de
Cyrtotreta
Entropneusta

Chordata

Urochordata
Notochordata

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